DNA甲基轉移酶3B(DNMT3B)真核蛋白操作步驟：

Ⅰ 實體組織蛋白的提取

1． 在每1mL 冷Lysis Buffer加入10 μL磷酸酶抑制劑， 1 μL蛋白酶抑制劑和 5μL 100mM PMSF，混勻。冰上保存數分鐘待用。

2．  每100mg固體組織置于培養皿中，剪碎成3mm×3mm左右的小塊，加入0.5～1 mL冷 Lysis Buffer，玻璃勻漿器上下手動勻漿15次，注意低溫操作；

3． 取組織勻漿液轉移到1.5mL預冷的離心管，離心10000轉/分，4℃離心5 min；

4． 取上清轉移至新的預冷的離心管中，即為全蛋白提取物，蛋白定量（Bradford法、BCA法）；

5． 分裝保存于-70℃,避免反復凍融。

Ⅱ 培養細胞蛋白提取

1． 貼壁培養的細胞，吸去培養基后，加入10mL/150mm培養板的冷PBS洗兩次，每次振搖數次以盡量去除培養液；

2． 懸浮培養的細胞或用細胞刮子刮下的貼壁細胞，將細胞及培養液移至離心管中， 1000轉/分離心10 min，再用10mL/150mm培養板的冷PBS，1000轉/分離心5 min洗兩次；

3． 在每 1mL冷 Lysis Buffer加入10μL磷酸酶抑制劑， 1μL蛋白酶抑制劑和5μL 100mM PMSF，混勻。冰上保存數分鐘待用。

4． 細胞洗滌后，轉至新的預冷的離心管中，加入上述配制好的冷Lysis Buffer，加入量如下表所示：

細胞數量

Lysis Buffer加入量

107個

0.5 mL～1 mL

5×106個

0.2 mL～0.5 mL

5．置于4℃搖床平臺上，溫和振蕩15 min；

6． 14,000rpm，4℃離心15min，取上清為全蛋白提取物, 蛋白定量（Bradford法、BCA法）；

7． 分裝保存于-70℃,避免反復凍融

DNA堿性膠上樣液（1.5 mL）

DNA堿性膠上樣液（10 mL)

DNA尿素-PAGE上樣液（1.5 mL）

DNA尿素-PAGE上樣液（10 mL）

DNA上樣液（紅），6×（非甘油）（見關聯產品）

DNA上樣液（藍），6×（非甘油）（見關聯產品）

DNA上樣液，6×（紅）

DNA上樣液，6×（藍）

miRNA尿素-PAGE上樣液（1.5 mL）

miRNA尿素-PAGE上樣液（10 mL）

三合一RNA上樣液（A型）

三合一RNA上樣液（B型）

核酸染料

SYBR Green Ⅱ核酸染料

超快核酸銀染試劑盒

電泳級SYBR Green I

電泳級耐熱型SYBR染料

綠如藍核酸染料（UV）（0.5 mL）

綠如藍核酸染料（UV）（1.5 mL）

綠如藍核酸染料（可見光型）

溴化乙錠干粉

溴化乙錠清除劑（EB清除劑）

溴化乙錠溶液（1.5 mL）